�。�3)ABC法的評價及實驗注意事項
ABC法具有：①敏感性強：Hsu等應用ABC法與PAP法相比發(fā)現敏感性較PAP法高20～40倍能顯示PAP法所不能顯示的抗原。這是因為生物素與抗生物素間有較強的結合力，一個抗生物素分子具有可與生物素結合的4個活性部位，其中一部分可與生物素標記的過氧化物酶相結合，另一部分可與生物素標記的免疫球蛋白結合。生物素通過氨基與抗體或過氧化物酶分子相結合，一個過氧化物酶或免疫球蛋白分子可以結合多個生物素分子，從而增加了免疫球蛋白或過氧化物酶結合抗生物素的能力。在ABC反應中，抗生物素作為橋連接于生物素標記的酶和生物素標記的抗體之間，而生物素標記的過氧化物酶分子又可作為橋連接于抗生物素分子之間，于是形成了一個含有3個以上過氧化物酶分子（大于PAP復合物)的網格狀復合物，敏感性極大提高。②特異性強，背景染色淡：由于敏感性高，第一抗體和第二抗體都可被稀釋至盡可能的高度，減少了非特異性染色。③方法簡便，節(jié) 約時間：由于ABC法敏感，操作的抗原抗體反應的時間可由PAP法所需的數天縮短為2h左右，各層抗體作用僅需15min。④國內上海生物制品所等單位制備的生物素—抗生物素染色藥盒經質量鑒定符合標準，已提供國內市場。⑤由于生物素與抗生物素具有和多種示蹤物結合的能力，可用于雙重或多重免疫染色。
實驗注意事項：
①內源性生物素活性及其消除：生物素是一種輔酶，是在脫羧基酶、羧基轉換酶等催化的代謝環(huán)節(jié) 中所產生的羧基的中間載體，它存在于某些組織和細胞內，在應用ABC染色時會與抗生物素結合而產生非特異性染色。因此，對抗生物素結合性較高的組織如肝、腎、白細胞、脂肪組織和乳腺，在應用ABC方法前應預先以0.01%的抗生物素和0.01%的生物素溶液分別作用20min左右，以消除內源性抗生物素結合活性，每次作用后用PBS洗5min，更換3次。Nar－itoku和Taylor（1982)報告神經組織中的乳糖可與抗生物素結合產生假陽性反應，以2—甲基-O-甘露糖預孵育切片可封閉神經組織內乳糖分子上的結合點，從而阻止與抗生物素蛋白的結合。必要時，也可用0.3%H2O2—100%甲醇孵育以消除內源性過氧化 物酶活性。
�、谏锼刂苿┲g相互親合性差異大，因此在應用ABC試劑時，應注意廠家和批號，對購進試劑應進行事先測試，以保證實驗結果的穩(wěn)定性。
�、跘BC試劑保存溫度以4℃為佳，據報告保存可達兩年之久，仍能獲得滿意效果，而在—20℃生物活性在短期內即被破壞。
2．橋抗生物素—生物素技術（Bridged Avidin –Biotin technique, 簡稱BRAB技術)
該技術方法是用生物素分別標記抗體和酶，然后以抗生物素為橋，把兩者連接起來（圖6-2)。
圖6-2B RAB技術
檢查抗原時，先用生物素標記的抗體與細胞（或組織內)的抗原反應，洗去未結合的抗體，加入抗生物素孵育后，洗去未結合的抗生物素，再加入已標記酶的生物素孵育，洗片，以細胞化學方法呈色反應。
3．標記生物素—抗生物素技術（Labelled Avidin—Biotin technique, LAB技術) 以生物素標記抗體作第一抗體，酶標記抗生物素作為第二抗體（圖6-3)。操作步驟如下：
圖6-3 LAB技術
（1)切片在含有25～50μg/ml生物素標記抗體（PBS液稀釋)中孵育1h，室溫。
（2)PBS洗2次，每次5min。
�。�3)用20～50μg/ml過氧化物酶標記的抗生物素液孵育90min，水洗。
�。�4)酶呈色反應。
BRAB法和LAB示是Guesdon及其同事們（1979)建立的，由于這二種方法都需以生物素標記第一抗體，應用不如ABC法普遍。但用于免疫細胞中免疫球蛋白的顯示具有特異性。二者比較，LAB法手續(xù)較簡便，但靈敏度較低。
生物素—抗生物素染色法采用免疫細胞化學染色中各種常用固定劑（見附錄)，均可獲得較滿意的結果。但有實驗報告推薦“PLP”固定液（即過碘酸—賴氨酸—多聚甲醛固定液)，其配制法亦見附錄。PLP固定后，依次經系列蔗糖磷酸緩沖液（10%，15%，20%各5min)，進行冰凍切片，貼于載片上，置室溫風干30min或37℃3～4h或過夜。染色前用PBS濕潤水化切片，可獲得滿意染色效果。
