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生物化學(xué)與分子生物學(xué)-實(shí)驗(yàn)指導(dǎo):標(biāo)準(zhǔn)實(shí)驗(yàn)報(bào)告

生物化學(xué)與分子生物學(xué):實(shí)驗(yàn)指導(dǎo) 標(biāo)準(zhǔn)實(shí)驗(yàn)報(bào)告:實(shí)驗(yàn)二十三? 血清γ-球蛋白的分離、純化與鑒定(綜合性實(shí)驗(yàn))【實(shí)驗(yàn)?zāi)康摹勘緦?shí)驗(yàn)采用多種實(shí)驗(yàn)技術(shù)方法以分離、純化和鑒定血清中的γ-球蛋白,達(dá)到訓(xùn)練綜合運(yùn)用及掌握電泳、離心、層析等基本的生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)操作技術(shù)的目的!緦(shí)驗(yàn)原理】血清中含有多種蛋白質(zhì)。不同種類的蛋白質(zhì)其分子量、溶解度以及在一定條件下帶電荷的情況不同,可根據(jù)這些性質(zhì)的差別,分離及提純蛋白質(zhì)。1. 利用清蛋白和球蛋白在高濃度中性鹽中的溶解度的

實(shí)驗(yàn)二十三? 血清γ-球蛋白的分離、純化與鑒定

(綜合性實(shí)驗(yàn))

【實(shí)驗(yàn)?zāi)康摹?/p>

本實(shí)驗(yàn)采用多種實(shí)驗(yàn)技術(shù)方法以分離、純化和鑒定血清中的γ-球蛋白,達(dá)到訓(xùn)練綜合運(yùn)用及掌握電泳、離心、層析等基本的生物化學(xué)實(shí)驗(yàn)操作技術(shù)的目的。

【實(shí)驗(yàn)原理】

血清中含有多種蛋白質(zhì)。不同種類的蛋白質(zhì)其分子量、溶解度以及在一定條件下帶電荷的情況不同,可根據(jù)這些性質(zhì)的差別,分離及提純蛋白質(zhì)。

1. 利用清蛋白和球蛋白在高濃度中性鹽中的溶解度的差異,采用鹽析法進(jìn)行分離。半飽和硫酸銨可使球蛋白沉淀析出,而清蛋白仍溶解在溶液中,經(jīng)過離心,沉淀部分即為含γ-球蛋白的粗制品。

2. 鹽析得到的蛋白質(zhì)中含有大量的中性鹽,會妨礙蛋白質(zhì)的進(jìn)一步純化,因此須除去。采用凝膠層析法,利用蛋白質(zhì)與無機(jī)鹽之間的分子量差異,達(dá)到去鹽的目的。

3. 純化的γ-球蛋白利用醋酸纖維薄膜電泳鑒定其純度。

【操作步驟】

1. 分段鹽析:

⑴ 取血清1.0 mL加入離心管中,加磷酸鹽緩沖液(PBS)1.0 mL,混勻。再逐滴加入pH 7.2飽和硫酸銨液2.0 mL,邊加邊搖勻。靜置20分鐘后離心(3000 rpm×10分鐘),傾去上清液(此液中主要含清蛋白)并盡量倒凈,沉淀為球蛋白。

⑵ 將上述離心管中的沉淀用1.0 mLPBS攪拌溶解,再逐滴加入飽和硫酸銨液0.5 mL,混勻,靜置20分鐘后離心(3000 rpm×10醫(yī)學(xué)全.在線分鐘),傾去上清液(此液中主要含α、β-球蛋白)并盡量倒凈,其沉淀為初52667788.cn/kuaiji/步純化的γ-球蛋白。如要獲得更純的γ-球蛋白,可重復(fù)此過程1次,最后用1.0mL PBS將沉淀溶解。

2. 脫鹽:

⑴ 裝柱:取層析柱,關(guān)緊下端出口,加蒸餾水少許,緩慢加入葡聚糖凝膠G-25懸液,待底部沉積1 cm厚的凝膠后,打開下端出口,繼續(xù)加入凝膠至凝膠沉積15 cm高,并注意保持凝膠床表面平整,然后經(jīng)PBS流洗平衡。

⑵ 上樣與洗脫:小心控制凝膠柱下端出口開關(guān),使柱上的緩沖液面剛好下降到凝膠床表面,關(guān)緊下端出口。用滴管吸取γ-球蛋白液,小心緩慢地沿層析柱內(nèi)壁加到凝膠床表面上,注意不要破壞凝膠床表面的平整。打開下端出口,使樣品進(jìn)入凝膠床,小心加入少許PBS于柱內(nèi),待進(jìn)入凝膠床后再加入少許的PBS,如此重復(fù)三次,以洗凈柱內(nèi)壁上的樣品溶液,然后可加入多量的PBS進(jìn)行洗脫,流速為5滴/分。

⑶ 收集:事先應(yīng)準(zhǔn)備好10支試管,于加樣開始后立即收集洗脫液。每收集約1.0 mL換一管。

⑷ 檢查:取瓷比色盤2個(一個為黑色背景,另一個為白色背景),按洗脫液的管號順序分別取1滴滴于比色盤中,前者各加10%三氯乙酸5滴;后者各加納氏試劑1滴。將檢查結(jié)果用“-,+,+”等符號記錄于表中。選取蛋白含量高且不含銨離子的樣品液進(jìn)行純度鑒定。

3. 純度鑒定:

⑴ 取于巴比妥緩沖液中充分浸濕醋酸纖維素薄膜1張,用濾紙吸去多余的水分,于無光澤面點(diǎn)樣。

⑵ 在距膜條一端約2cm處,用X光軟片蘸取全血清和純化的γ-球蛋白樣品液(第3管)分別點(diǎn)于膜條上。

⑶ 將巴比妥緩沖液加于電泳槽內(nèi),再將點(diǎn)樣后的膜條放置于電泳槽槽架上。放置時膜條的無光澤面應(yīng)向下,點(diǎn)樣端置于陰極,膜條與濾紙需貼緊。

⑷ 接通電源,以150V恒壓電泳約45分鐘。

⑸ 通電完畢后,用鑷子將膜條取出,浸于盛有氨基黑10B的染色液中,染色1分鐘取出,立即浸入盛有漂洗液的培養(yǎng)皿中,反復(fù)漂洗數(shù)次,直到背景漂凈為止。用濾紙吸干膜條,比較純化前與純化后電泳圖譜的變化,以確定樣品的純度。

結(jié)果和計(jì)算

1. 凝膠柱分離流洗結(jié)果:

管號

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

蛋白沉淀

-

+

++

-

-

-

-

-

-

-

銨離子

-

-

-

-

-

+

++

++

++

+

2. 電泳鑒定結(jié)果:

 

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純化前血清蛋白的醋纖膜電泳

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純化后血清蛋白的醋纖膜電泳

【結(jié)論和討論】

1. 電泳鑒定結(jié)果顯示,血清蛋白樣品經(jīng)分段鹽析、凝膠層析等技術(shù)方法分離純化后得到了較純的γ-球蛋白。因此,采用上述實(shí)驗(yàn)方法能夠從血清中純化γ-球蛋白。

2. 第3支試管中的收集液為蛋白含量最高且不含銨離子的樣品液,因此通過凝膠層析能有效去除樣品中的鹽離子成分。

...
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