。ǘ)順序飽和加樣程序
1.基本原理先將標(biāo)準(zhǔn)物或血樣品與抗血清混勻,免疫反應(yīng)6~24h,使抗原與抗體充分結(jié)合,甚至達(dá)到平衡,然后再加入標(biāo)記抗原,與抗體反應(yīng)12~24h,最后分離B與F,這稱為順序飽和分析法。
應(yīng)用順序飽和加樣,可以提高測定方法的靈敏度。Utiger在做人促甲狀腺激素(TSH)放射免疫分析時(shí),將標(biāo)記物延至第2天加入,發(fā)現(xiàn)其靈敏度增加兩倍。如果縮短最后的溫育時(shí)間,仍可取得滿意的結(jié)果。所以一般認(rèn)為,在順序飽和加樣中,第1次溫育時(shí)間可以長,而第2次溫育時(shí)間要短,這樣可以提高靈敏度。但也有相反的意見,認(rèn)為順序飽和加樣,是使用過量抗體,會(huì)使靈敏度受到一定影響。如果使用抗體不過量,溫育時(shí)間縮短,在抗原和抗體結(jié)合未達(dá)到平衡飽和時(shí)就加入標(biāo)記物,這樣既不影響加靈敏度,反而比較穩(wěn)定,甚至可提高靈敏度。
2.加樣程序 以人血漿精氨酸加壓素RIA測定程序?yàn)槔ㄖ苯訙y定)。
。1)加樣(單位μl;總反應(yīng)體積600μl)
標(biāo)準(zhǔn)曲線 | 血漿 | |||||||||
T | NSB | Bo | 1Pg | 5Pg | 10Pg | 50Pg | 100Pg | 500Pg | ||
管號(hào) | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | 9 | 10 |
AVP標(biāo)準(zhǔn)液 | / | / | / | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | / |
樣品 | / | / | / | / | / | / | / | / | / | 300 |
無肽血漿 | / | 300 | 300 | 300 | 300 | 300 | 300 | 300 | 300 | / |
AVP抗血清 | / | / | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 |
緩沖液 | / | 200 | 100 | / | / | / | / | / | / | 100 |
在4。C下孵育12~24h | ||||||||||
125 I-AVP |
100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 |
(2)孵育:4℃,24h。
。3)分離B與F。
無肽血漿,用于血漿的直接測定。其制備方法為:在電磁攪拌下,抽取2%加膜活性炭溶液5ml,共兩管,離心、去上清。血漿5ml,倒入上述活性炭管中,加蓋,充分振蕩10min,離心,上清倒入上述另一活性炭管中,振蕩10min,再離心,取上清,即無肽血漿。血漿中的生物活性物質(zhì)被活性炭吸附而去除。
。ㄈ)計(jì)數(shù)、繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線與測定樣品含量
以活性炭分離B與F,沉淀計(jì)數(shù)是F的cpm。T—F—NSB,得B的cpm數(shù)。
計(jì)算標(biāo)準(zhǔn)管與樣品管結(jié)合(B)的cpm數(shù)及與零標(biāo)準(zhǔn)管結(jié)合(B0)的比(B/B0×100%)。
用半對數(shù)紙,以標(biāo)準(zhǔn)管的B/B0為縱座標(biāo),以各標(biāo)準(zhǔn)管含量為橫座標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。
根據(jù)樣品的結(jié)合率(B/B0×100%),從標(biāo)準(zhǔn)曲線中找出被測樣品抗原的含量,再換算成每毫升血漿含某抗原的量,或每毫克(組織濕重)含某抗原的量。
三、放射免疫分析的質(zhì)量控制
(一)質(zhì)量控制的目的和內(nèi)容
放射免疫分析的質(zhì)量控制實(shí)際上就是控制測定誤差,監(jiān)督測定結(jié)果。它包括兩方面的內(nèi)容:一方面對測定結(jié)果做精確分析;另一方面鑒定常規(guī)測定方法,對那些測定結(jié)果不好的方法加以改進(jìn),并建立新的測定方法。質(zhì)量控制分四個(gè)方面:
1.在一個(gè)測定方法內(nèi)產(chǎn)生的誤差。
2.在同一實(shí)驗(yàn)室內(nèi)不同方法之間產(chǎn)生的誤差。
這兩種情況屬于內(nèi)部質(zhì)量控制。
3.用同一測定方法,在各實(shí)驗(yàn)室之間產(chǎn)生的誤差。
4.采用不同方法,在各實(shí)驗(yàn)室之間產(chǎn)生的誤差。
后兩種情況屬于外部質(zhì)量控制。